湖南医药学院 湖南怀化 418000
摘要 目的:探讨红花提取物对大鼠血脂的影响。方法:采用高脂饲料喂养法建立高脂血症大鼠模型,将造模成功的大鼠随机分为4组,即模型对照组、低、中、高剂量组,每组10只。另设空白对照组10只,以普通饲料喂养。低、中、高剂量组每天分别给予16.67mg/kgBW、33.3mg/kgBW、100mg/kgBW红花提取物灌胃,模型对照组和空白对照组均给予等容积灭菌纯化水灌胃。所有大鼠均连续灌胃31d后,检测各组大鼠血清总胆固醇(TC)、甘油三酯(TG)、高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)和低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)水平。结果:给予模型组高脂饲料2周后,模型对照组与空白对照组比较,TC、TG、LDL-C显著升高(P<0.05),表明模型建立成功。给予受试物前各剂量组TC、TG、LDL-C与模型对照组比较,差异无显著性(P>0.05)。给予大鼠不同剂量的受试物31d后,与模型对照组比较,中、高剂量组TC、TG显著降低(P<0.05);各剂量组HDL-C、LDL-C均无显著性差异(P>0.05)。结论:根据国食药监保化[2012]107号9个规定中辅助降血脂动物功能实验评价标准,可判定红花提取物具有辅助降血脂的功效。
关键词 红花 血脂
近年来,我国血脂异常人数呈逐年增加趋势,成人血脂异常比例高达40.4%[1]。血脂异常是动脉粥样硬化、冠心病等心血管疾病的重要危险因素之一,降低血脂水平可明显减少动脉硬化性心血管疾病的发病和死亡风险[2]。
红花为菊科植物红花的干燥花。全国各地都有栽培,主产于新疆、河南、浙江和四川等省。《中华人民共和国药典》记载,红花味辛,性温。归心、肝经。红花作为我国传统草药,具有活血通经、散瘀止痛、降血压和降血脂的功效,用于治疗痛经、跌打损伤、冠心病、心绞痛、高血脂、高血压等疾病[3]。研究显示,红花中含有黄酮类、生物碱类、木质素类、有机酸类和烷基二醇类及多炔类化合物等[4]。现代药理学研究表明,红花主要有抗凝血、抗血栓形成,兴奋心脏,增加冠状动脉血流量和降低冠状动脉阻力,增加心肌营养性,扩张血管、改善微循环,降低血压及调节血脂,抗炎,镇痛,兴奋子宫,耐缺氧,保肝,免疫调节,抗肿瘤等作用[5]。
本实验选用红花提取物为研究对象,探讨红花提取物对大鼠血脂的影响。
1 材料
1.1受试物 红花提取物(红花0.2kg,加水2000ml加热至沸腾,提取2次,每次2h,过滤,合并滤液,浓缩干燥得提取物粉末)。提取物人体推荐用量为每日0.2g,人体按60kg计,即3.33mg/kg体重。
1.2实验动物 SPF级SD雄性大鼠50只,体重180~220g,购自北京维通利华实验动物技术有限公司。
2 实验方法 参照国食药监保化[2012]107号9个规定中辅助降血脂动物功能实验方法进行。
2.1 造模及分组 实验根据人体推荐剂量的5倍、10倍、30倍,即每日16.67mg/kgBW、33.3mg/kgBW、100mg/kgBW设为低、中、高剂量组。同时设空白对照组和模型对照组。10只大鼠给予维持饲料作为空白对照组,40只大鼠给予高脂饲料作为模型组。高脂饲料配方:(在普通饲料中添加20.0%蔗糖、15.0%猪油、1.2%胆固醇、0.2%胆酸钠,适量的酪蛋白、磷酸氢钙、石粉等)。2周后,根据所检测TC水平将造模成功的大鼠随机分为模型对照组、高剂量组、中剂量组和低剂量组,每组10只。低、中、高剂量组每天分别给予16.67mg/kgBW、33.3mg/kgBW、100mg/kgBW红花提取物灌胃,每天灌胃1次,连续31d。模型对照组和空白对照组大鼠给予等容积的灭菌纯化水。连续灌胃31d后,所有大鼠均不禁食眼内眦采血,离心后取血清,测定血清TC、TG、HDL-C及LDL-C水平。
2.2统计学方法 采用SPSS16.0统计软件对数据进行分析,计量资料用均数±标准差(X±S)表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用LSD-t检验,以P<0.05为差异有统计学意义。
3结果
3.1 大鼠体重变化
表1 受试物对大鼠体重的影响 n=10
组别 | 实验初期 | 实验末期 |
高剂量组 | 293.4±11.4 | 516.3±26.3 |
中剂量组 | 290.5±13.2 | 514.9±27.0 |
低剂量组 | 288.7±12.6 | 522.5±25.6 |
空白对照组 | 263.6±9.7 | 468.1±28.2 |
模型对照组 | 291.9±12.5∆ | 517.4±24.5∆ |
注:∆表示与空白对照组比较P<0.05
给予模型组大鼠高脂饲料2周后和给予受试物31d后,模型组与空白对照组比较,大鼠体重显著增加(P<0.05);各剂量组与模型组比较,均无显著性差异(P>0.05)。
3.2 对大鼠血清TC、TG、HDL-C、LDL-C的影响
表2 受试物对高脂模型大鼠TC、TG的影响 n=10
组别 | TC,mmol/L | TG,mmol/L | ||
实验前 | 实验后 | 实验前 | 实验后 | |
高剂量组 | 4.23±0.53 | 3.04±0.49* | 2.68±0.63 | 1.99±0.32* |
中剂量组 | 4.34±0.46 | 3.27±0.52* | 2.66±0.60 | 2.04±0.47* |
低剂量组 | 4.27±0.41 | 4.10±0.51 | 2.61±0.70 | 2.52±0.44 |
空白对照组 | 2.09±0.12 | 2.02±0.49 | 1.84±0.35 | 1.93±0.30 |
模型对照组 | 4.25±0.61∆ | 4.12±0.50∆ | 2.68±0.65∆ | 2.59±0.45∆ |
注:∆表示与空白对照组比较P<0.05;*与模型对照组比较P<0.05
表3 受试物对高脂模型大鼠HDL-C、LDL-C的影响 n=10
组别 | HDL-C,mmol/L | LDL-C,mmol/L | ||
实验前 | 实验后 | 实验前 | 实验后 | |
高剂量组 | 0.74±0.11 | 0.89±0.04 | 1.21±0.21 | 1.20±0.24 |
中剂量组 | 0.73±0.10 | 0.86±0.05 | 1.26±0.30 | 1.24±0.18 |
低剂量组 | 0.76±0.12 | 0.86±0.04 | 1.25±0.16 | 1.21±0.27 |
空白对照组 | 0.71±0.13 | 0.72±0.06 | 0.58±0.06 | 0.59±0.04 |
模型对照组 | 0.72±0.10 | 0.75±0.05 | 1.31±0.17∆ | 1.36±0.22∆ |
注:∆表示与空白对照组比较P<0.05
给予模型组高脂饲料2周后,模型对照组与空白对照组比较,TC、TG、LDL-C显著升高(P<0.05),表明模型建立成功。给予受试物前各剂量组TC、TG、LDL-C与模型对照组比较,差异无显著性(P>0.05)。给予大鼠不同剂量的受试物31d后,与模型对照组比较,中、高剂量组TC、TG显著降低(P<0.05);各剂量组HDL-C、LDL-C均无显著性差异(P>0.05)。
4讨论
本实验结果显示:给予模型组高脂饲料2周后,模型对照组与空白对照组比较,TC、TG、LDL-C显著升高(P<0.05),表明模型建立成功。给予受试物前各剂量组TC、TG、LDL-C与模型对照组比较,差异无显著性(P>0.05)。给予大鼠不同剂量的受试物31d后,与模型对照组比较,中、高剂量组TC、TG显著降低(P<0.05);各剂量组HDL-C、LDL-C均无显著性差异(P>0.05)。根据国食药监保化[2012]107号9个规定中辅助降血脂动物功能实验评价标准,可判定红花提取物具有辅助降血脂的功效。
引用文献:
诸骏仁,高润霖,赵水平,等.中国成人血脂异常防治指南(2016年修订版).中国循环杂志.2016,31(10):937-953.
汤晓菲,马志红.航天系统职工血脂异常情况调查.预防医学.2018,30(9):939-942.
[3]郑虎占,董泽宏,佘靖.中药现代研究与应用.北京:学苑出版社.1998(3):2057.
[4]姜建双,夏鹏飞,冯子明,等.红花化学成分研究.中国中药杂志.2008,33(24):2911-2913.
[5]徐如英,童树洪.红花的化学成分及药理作用研究进展.中国药业.2010,19(20):86-87.