沈阳药科大学
摘要
背景:实验通过对鸡蛋的主要成分和抗病毒药物的结构性质进行探讨,在其他基质试验经验中,得出较为快速合理的提取和净化步骤,结合液相色谱-串联质谱(LC-MS/MS)仪器分析,在液相色谱柱的筛选、梯度洗脱溶液及顺序参数、质谱条件等进行优化,对鸡蛋中残留的金刚烷胺、金刚乙胺进行内标法定量分析检测,以达到快速的检测技术。方法:在5g鸡蛋样品中,加入三氯乙酸-乙腈(9:1)混合提取液15mL,超声10min,漩涡3min,高速离心机恒温20℃下10000r/min离心5min。净化步骤为:活化过的PCX小柱中依次加入净化液2%甲酸5mL、1%甲酸乙腈3mL,真空抽干PCX小柱,用4mL氨水-乙酸铵-甲醇混合溶液进行洗脱,氮气浓缩仪50℃吹干,加入1mL溶解液0.1%甲酸甲醇与水,涡旋混合30s后过0.22μm膜。结果: 在1,2,5,10μg/kg加标梯度下,两种抗病毒药物的平均回收率在80%以上,金刚烷胺的回收率高达85%,RSD为0.118~0.187;金刚乙胺的回收率为81%~98%, RSD为0.038~0.134。两种抗病毒药物的标准曲线在0~20μg/kg中呈良好线性关系,R2≥0.999。
关键词:液相色谱-串联质谱法;金刚烷胺;金刚乙胺;鸡蛋
1背景
两种抗病毒药物金刚烷胺、金刚乙胺都属于三环胺类。1964 年Davis等首先报道金刚烷胺的抗病毒效果,1966年亚洲感冒爆发同时其治疗药在美国上市, 10年后在预防药的基础上确认为治疗药。接连载入英、美、日、中的药典,1971年中国获批生产。金刚烷胺的同位体之一,金刚乙胺,由美国Bristol—Myers Squibb公司研发,可通过乙胺基代替金刚烷胺的NH而得。
2 实验方案设计
2.1 标准储备液配制
根据下表的纯度或规格,计算出所需用量,精确称量所需的金刚烷胺、金刚乙胺、金刚烷胺-D6、美金刚-D6,分别置于四个10 mL容量瓶中,用甲醇溶解至刻度线,配制成100μg /mL的标准储备液,并转移到带标签的棕色玻璃瓶,在-18℃的条件下储存,有效期6个月。实验时,用甲醇按需稀释,配制成混合标准工作溶液。金刚烷胺、金刚烷胺-D6、金刚乙胺、美金刚-D6,四种标准品的相关信息,包括英文名,存放条件,纯度或规格,生产商等见表2.1。
表2. 1 四种标准品相关信息
标准品 | 英文名 | 储存温度 | 纯度/规格 | 生产商 |
金刚烷胺 | Amantadine | 20±4℃ | 97.5% | ANPEL |
金刚烷胺-D6 | Amantadine-D6 | 20±4℃ | 98.1% | CDN |
金刚乙胺 | Rimantadine | 4-20℃ | 98.0% | TRC |
美金刚-D6 | Memantine-D6 | 4-20℃ | 1mL,100mg/L | ANPEL |
2.2 标准中间溶液的配制
准备四个洁净的10mL容量瓶,用移液器准确移取0.1mL的2.1标准储备液,甲醇稀释至刻度线,配成浓度为1μg /mL的混合标准中间液和混合内标中间液,转移到带标签的棕色玻璃瓶,置于-18℃条件下保存,有效期3个月。实验时将以上溶液取出,放置到室温,轻轻晃动几秒后,移取适量的中间内标溶液和中间标准溶液,用乙腈稀释,配制成质量浓度分别为0,1,2,5,10,20μg /kg的标准工作液。
2.3 实验所需溶液
实验前把提取和净化所需的溶液按照表2.2配制好,装进贴好标签的玻璃瓶,室温下储存以备用。
表2.2各种溶液的比例/浓度
名称 | 溶液 | 比例/浓度 |
提取液 | 20g/L三氯乙酸—乙腈 | 9:1 |
净化液A | 甲酸 | 2% |
净化液B | 甲酸乙腈 | 1:99 |
洗脱液 | 氨水-5mol/L乙酸铵-甲醇 | 1:1:38 |
溶解液 | 0.1%甲酸甲醇与水 | 1:1 |
2.4 实验基质
本实验以鸡蛋为基质,对残留的两种抗病毒药物金刚烷胺、金刚乙胺进行检测、分析。因此我们需要在实验前,准备好鸡蛋样品,鸡蛋是本实验室平时实验的样品,无特定添加。在实验室将鸡蛋打碎去壳,蛋黄和蛋清用组织搅碎机搅拌均匀,倒入带标签的洁净的密封袋,密封冷冻储藏。基质制备过程,尽可能地阻止外界干扰,保护基质不受污染,防止残留物含量的变化。
3 液相色谱-串联质谱(LC-MS/MS)实验
3.1 液相色谱条件
液相色谱条件及参数见表3.1。
表3.1液相色谱条件及参数
液相色谱条件 | 参数 |
色谱柱 | ACQUITY UPLC BEH C18 (2.1mm×100mm,1.7μm) |
进样量 | 5.00μL |
流速 | 0.2000mL/min |
流动相 | A为乙酸铵溶液(5mmol/L,含0.1%甲酸) B为乙腈; |
梯度洗脱条件见表3.2。
表3.2梯度洗脱条件
时间(min) | 流动相A% | 流动相B% |
0.00 | 90 | 10 |
1.00 | 90 | 10 |
2.00 | 10 | 90 |
4.50 | 90 | 10 |
5.50 | 90 | 10 |
3.2质谱条件
质谱条件检测方式及参数如表3.3。
表3.3质谱条件检测方式及参数
质谱条件 | 方式、参数 |
检测方式 | 多反应监测(色谱) |
离子化模式 | 电喷雾离子源正离子化模式(ESI+) |
毛细管电压Capillary | 3.30kV |
源偏移Source Offset | 50V |
脱溶剂气温度Desolvation Temperature | 350℃ |
锥孔反吹气流量Cone Gas Flow | 150 L/Hr |
脱溶剂气流量Desolvation Gas Flow | 900 L/Hr |
两种抗病毒药金刚烷胺、金刚乙胺以及内标物的定量监测分析参数如表3.3。
表3.3抗病毒药及内标物的多反应离子监测分析参数
名称 | 母离子对(m/z) | 子离子对(m/z) | 锥孔电压(V) | 碰撞能量(eV) |
金刚烷胺 | 152.1 | 135.0 | 40 | 15 |
93.0 | 24 | |||
金刚烷胺-D6 | 158.1 | 141.0 | 40 | 15 |
金刚乙胺 | 180.1 | 163.0 | 30 | 15 |
121.0 | 23 | |||
美金刚-D6 | 186.1 | 169.1 | 30 | 15 |
4 结论
本设计用液相色谱-串联质谱(LC-MS/MS)分析方法,快速测定鸡蛋中两种金刚烷胺、金刚乙胺残留量。通过查阅相关文献,比较各种试剂与材料,确定合适的提取和净化方法,同时改进仪器的各种参数,达到快速简便的检测目的,对抗病毒药物残留的检验提供一定的参考价值。
实验确定:在5g鸡蛋样品中,加入三氯乙酸-乙腈(9:1)混合提取液15mL,超声10min,漩涡3min,高速离心机恒温20℃下10000r/min离心5min。取5mL上清液于活化过的PCX小柱,依次加入净化液2%甲酸5mL、1%甲酸乙腈3mL,真空抽干PCX小柱,用4mL氨水-乙酸铵-甲醇混合溶液进行洗脱,氮气浓缩仪50℃吹干,加入1mL溶解液0.1%甲酸甲醇与水,涡旋混合30s后过0.22μm膜。液相色谱-串联质谱法测定,采用ACQUITY UPLC BEH C18(2.1mm×100mm,1.7μm)色谱柱分离,电喷雾正离子模式多反应检测,内标法定量。
结果表明:两种抗病毒药物金刚烷胺、金刚乙胺,在0~20ng/mL范围内,呈良好的线性关系,R2≥0.999;加标回收率平均值≥80%。
参考文献
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